Аспирация при подкожных инъекциях

Обновлено: 19.04.2024

Эта информация поможет вам научиться самостоятельно делать подкожную инъекцию (укол) с помощью предварительно заполненного шприца. Подкожная инъекция — это инъекция, которая вводится под кожу. Предварительно заполненный шприц — это шприц, который продается уже с лекарством внутри.

Медицинский сотрудник покажет вам, как сделать инъекцию самостоятельно. Вы можете воспользоваться информацией из этого материала в качестве напоминания, когда будете делать инъекцию дома.

Как хранить предварительно заполненные шприцы

Способ хранения предварительно заполненных шприцев зависит от вида лекарства в них. Большинство лекарств хранятся при комнатной температуре, но некоторые следует хранить в холодильнике. Медицинский сотрудник расскажет, как хранить ваши шприцы. Не храните предварительно заполненные шприцы в морозилке и не оставляйте их на солнце.

Если у вас возникли вопросы о хранении или перевозке предварительно заполненных шприцев во время поездок, обратитесь к своему медицинскому сотруднику.

Что делать, если лекарство замерзло

Если лекарство внутри шприца замерзло, положите его ближе к передней части холодильника или на полку в дверце холодильника, чтобы оно оттаяло. Не используйте лекарство, если оно замерзало более одного раза. Позвоните своему медицинскому сотруднику, чтобы получить дальнейшие указания.

Как самостоятельно сделать подкожную инъекцию

Подготовьте все необходимое

Разложите принадлежности на чистой, ровной поверхности (например, на обеденном столе или на кухонной столешнице). Вам понадобятся:

1 спиртовая салфетка
1 небольшой марлевый или ватный тампон, кроме случаев, когда вы самостоятельно делаете инъекцию enoxaparin (Lovenox ® ) или heparin
1 повязка (например, пластырь Band-Aid ® )

Прочный контейнер для утилизации шприца и иглы (например, пластиковый флакон с крышкой из-под жидкого средства для стирки)

Прочитайте материал Хранение и утилизация бытовых медицинских игл, чтобы узнать, как подобрать контейнер для утилизации острых предметов.

Если вы храните предварительно заполненные шприцы в холодильнике, достаньте один шприц за 30 минут до инъекции. Когда вы будете делать инъекцию, лекарство должно быть комнатной температуры.
Не встряхивайте шприц. Из-за встряхивания лекарство в нем может испортиться.

Проверьте предварительно заполненный шприц

Проверьте следующую информацию о лекарстве:

Название. Убедитесь, что она совпадает с назначенной вам медицинским сотрудником.
Доза. Убедитесь, что она совпадает с назначенной вам медицинским сотрудником.
Срок годности. Убедитесь, что срок годности не истек.
Цвет. Убедитесь, что лекарство в шприце прозрачное и бесцветное. Не используйте его, если оно вспенилось, изменило цвет, помутнело, или в нем появились кристаллики.

Если название лекарства или его доза не совпадает с тем, что назначил ваш медицинский сотрудник, срок действия лекарства истек либо лекарство вспенилось, изменило цвет, помутнело или в нем появились кристаллики, не используйте шприц. Если у вас есть другой шприц, воспользуйтесь им. После чего свяжитесь с медицинским сотрудником или фармацевтом и сообщите об этом. Возможно, вы сможете принести полный шприц в аптеку, чтобы заменить его.

Подготовьте место инъекции

Выберите на теле такое место для инъекции, где кожу можно оттянуть на 1–2 дюйма (2,5–5 см). Лучше всего выбрать один из следующих участков (см. рисунок 1):

брюшная полость (живот), кроме участка в 2 дюйма (5 сантиметров) вокруг пупка;
середина передней или середина внешней поверхности бедра;
верхняя часть ягодиц;
задняя поверхность плеча, если инъекцию вам сделает другой человек.

Если медицинский сотрудник попросил вас делать инъекцию в определенное место, следуйте этим рекомендациям. Некоторые лекарства работают лучше при введении в определенные места. Не вводите лекарство в болезненные, покрасневшие, ушибленные, твердые участки или в области со шрамами либо растяжками.

Рисунок 1. Места инъекций

Делайте каждую последующую инъекцию в другое место. Для отслеживания мест удобно использовать блокнот или календарь. Введение лекарства в одно и то же место приводит к формированию рубцовой ткани. Из-за этого лекарство может перестать работать так, как должно. Это также затруднит введение иглы в кожу.

Выбрав место введения, следуйте инструкциям ниже.

Тщательно вымойте руки водой с мылом или обработайте их спиртосодержащим антисептиком.
- Если вы моете руки водой с мылом, намочите их, намыльте, тщательно потрите друг об друга в течение 20 секунд, затем ополосните. Просушите кожу рук одноразовым полотенцем и закройте кран с помощью того же полотенца.
- При использовании спиртосодержащего антисептика обязательно нанесите его на руки и трите руки друг о друга до его полного высыхания.
Подверните одежду, закрывающую место инъекции.
Откройте спиртовую салфетку. Протрите кожу в месте инъекции салфеткой, крепко прижимая ее к коже. Начните с центра выбранного участка и двигайтесь к внешним краям круговыми движениями.
Дайте коже высохнуть. Не обмахивайте это место и не дуйте на него.

Сделайте себе инъекцию

Достаньте шприц из упаковки.
- Если вы делаете инъекцию Lovenox, убедитесь, что в шприце есть пузырек воздуха. Если пузырька нет, отложите этот шприц и воспользуйтесь другим. После того как вы сделаете себе инъекцию, свяжитесь с медицинским сотрудником или фармацевтом и сообщите об этом. Возможно, вы сможете принести полный шприц в аптеку, чтобы заменить его.
Доминирующей рукой (рукой, которой вы пишете) возьмитесь за середину шприца, как за ручку или дротик для игры в дартс.
Осторожно снимите колпачок с иглы (см. рисунок 2). Сняв колпачок с иглы не кладите шприц. Старайтесь, чтобы ничто, даже ваши пальцы, не касалось иглы. Если что-либо коснулось иглы, поместите шприц в контейнер для острых предметов. Начните процедуру заново с новым шприцем. После того как вы сделаете себе инъекцию, свяжитесь с медицинским сотрудником и сообщите об этом.

Рисунок 2. Снимите колпачок с иглы

Рисунок 3. Рисунок 3. Введите иглу в кожу

Рисунок 4. Опустите поршень до упора

Не давите на место инъекции, если вы сделали себе инъекцию Lovenox или heparin. В случае необходимости наложите повязку на место инъекции.
Если вы поставили себе инъекцию какого-либо другого лекарства, отличного от Lovenox и heparin, приложите ватный или марлевый тампон к месту инъекции и прижмите его на несколько секунд. В случае необходимости наложите повязку на место инъекции.

Рисунок 5. Возьмите защитную насадку

Рисунок 6. Надвиньте защитную насадку

Для получения информации о том, как выбрать контейнер для острых предметов и утилизировать использованные шприцы и другие бытовые медицинские иглы, ознакомьтесь с нашим материалом Хранение и утилизация бытовых медицинских игл.

Когда следует обращаться к своему медицинскому сотруднику?

Позвоните своему медицинскому сотруднику, если у вас появились следующие симптомы:

Из места инъекции не перестает идти кровь.
У вас появилась очень сильная боль.
Вы ввели лекарство в неправильное место.
У вас поднялась температура 100,4 °F (38 °C) или выше.
У вас появились признаки аллергической реакции, например отек, покраснение, зуд или сыпь.
Вы не можете воспользоваться шприцем, поскольку срок годности лекарства истек, лекарство вспенилось, изменило цвет, помутнело или в нем появились кристаллики.
Вы не можете воспользоваться шприцем, поскольку коснулись чего-либо иглой перед инъекцией.
Вы не можете воспользоваться предварительно заполненным шприцем с Lovenox, поскольку в нем нет пузырька воздуха.
У вас возникли трудности с введением инъекции.

Дата последнего обновления

Если у вас появились вопросы, задайте их непосредственно сотруднику вашей медицинской бригады. Если вы являетесь пациентом центра MSK, и вам нужно обратиться к медицинскому сотруднику после 17:00 а также в выходные и праздничные дни звоните по номеру .

Вероятность инфильтрации и экстравазального введения значительно уменьшается, если медицинская сестра понимает причины этих явлений, правильно выбирает вену для пункции или катетеризации и оборудование, а также тщательно следит за пациентом.

В соответствии со стандартами сестринской практики, инфильтрацией называется непреднамеренное введение раствора лекарственного средства в ткани, окружающие вену. Такие лекарственные средства могу вызывать раздражение окружающих тканей, если они окажутся в подкожной клетчатке, если же они выливаются на кожу, может развиваться контактный дерматит. Экстравазация — это введение значительного количества раствора лекарства мимо вены, и в некоторых случаев она сопровождается даже тканевыми некрозами.

В связи с этим, надо помнить, что некоторые растворы лекарственных средств не предназначены для ведения в периферические вены. Инфильтрация и экстравазация возникают чаще всего тогда, когда катетер не полностью находится в просвете вены, или же в стенке вены есть разрыв, который способствует утечке раствора. Причины этого явления:

Катетер введен в вену неправильно;
Вена повреждена, вокруг имеется отек клетчатки, который препятствует правильному току крови, раствор задерживается и вытекает в окружающие ткани;
Внутри вены или вокруг катетера формируется тромб, который задерживает раствор, он выходит в окружающие ткани. Также при этом развиваются флебит или тромбофлебит;
Катетер прокалывает или развивает противоположную стенку вены, что также может сопровождаться флебитом или тромбофлебитом;
Катетер вытягивается из просвета вены при движении пациента или вследствие ненадежной фиксации.

Хотя чаще всего инфильтраты и экстравазаты возникают при инфузии в периферическую вену, эти осложнения могут развиваться и при использовании центральных венозных катетеров и имплантируемых портов. В этом случае последствия могут быть катастрофическими вследствие большого объема используемого раствора, и еще потому, что эти устройства используются для введения концентрированных и вязких растворов.

В большинстве случаев инфильтраты не приводят к тяжелому поражению тканей, но для пациента они очень некомфортны. Также приходится удалять катетер из вены и устанавливать новый, что может уменьшить число потенциально доступных вен, отнимает время и увеличивает затраты.

Самые серьезные последствия наступают, когда вне просвета сосудов оказываются раздражающие растворы, например, содержащие кальций, калий или препараты для химиотерапии. Повреждение тканей может напрямую зависеть от рН раствора: сильно щелочные или кислые растворы вызывают самые настоящие химические ожоги. Значительно концентрированные лекарственные препараты могут даже вызывать некроз тканей.

Степень повреждения при инфильтрации или экстравазации может зависеть от того, как быстро будут предприняты все меры, так как даже небольшое количество жидкости создает компрессию и повреждение. При раннем выявлении и лечении инфильтратов и экстравазатов можно предупредить повреждение нервов и тканей, и предупредить хирургическое вмешательство. Неспособность своевременно распознать эти осложнения может привести к стойкой деформации, и потере функции, даже в том случае, если пациенту будет проведена реконструктивная операция. Часто такие ошибки заканчиваются судебным процессом.

Чтобы избежать проблем, нужно быть настороженным в отношении признаков и симптомов инфильтрации и экстравазации, которые включают в себя:

«Надутую» кожу, которая выглядит блестящей, натянутой и плотной;
Отек в месте введения иглы или катетера;
Холодная наощупь кожа;
Дискомфорт;
Замедление или прекращение инфузии;
Утечка раствора лекарственного препарата вокруг места введения или под повязкой;
Если над местом инфузии наложить жгут, инфузия не прекращается;
Нет тока крови по катетеру, если пережать вену и опустить пакет с раствором (наличие крови не исключает инфильтрацию).

Дискомфорт и жжение при инфузии раздражающего или вязкого раствора может указывать на повреждение сосуда. Жалоба на боль в месте установки катетера или иглы в вену — это основной признак того, что нужно быстро вмешиваться. В этом случае необходимо принять следующие меры:

Прекратить инфузию;
Если нет противопоказаний, установить катетер в вену на другой руке;
При инфильтрате — наложить компресс, если произошла экстравазация, особенно хлорида кальция — срочно приглашайте врача.

До введения вязкого, могущего вызвать сужение сосуда, или токсичного раствора лекарственного средства, необходимо знать, какие нейтрализующие вещества (антидоты) применяются при экстравазации и инфильтрации.

Для предотвращения инфильтрации, нужно выбирать подходящую вену. Выбирайте гладкую и упругую вену, которая не похожа на веревку с узлами. Избегайте сгибательных поверхностей суставов, так как здесь смещение катетера происходит особенно часто. Если такое место — единственное, куда можно установить катетер, используйте шину. Если пациент в сознании, инфузия долгая, а ему хочется двигаться, и например, читать книжку, то лучше избегать использования вен кисти.

Чаще всего оптимально катетеризировать вены предплечья, особенно внутренней его части. Кости — это естественная шина, вены достаточно хорошо фиксированы, поэтому вероятность смещения катетера значительно уменьшается.

Начинайте выбирать вену на предплечье так низко, насколько это вообще возможно (не стоит использовать место сделанной недавно венепункции), но не стоит ипользовать вены на внешней поверхности предплечья около запястья, так как там близко проходят нервы. Лучше не использовать вены внутренней части ниже локтя (антекубитальная ямка) — инфильтрацию в этой зоне очень легко просмотреть и она бывает немаленькой. При значительно инфильтрации в антекубитальной ямке жидкость сдавливает важные анатомические структуры и может привести к повреждению нервов и некрозу тканей.

Чтобы раствор лекарственного препарата максимально смешивался с кровью, выбирайте катетер минимально возможного диаметра, это позволит крови смешиваться с инфузатом, и обеспечить его адекватное разведение.

Всегда водите иглу срезом вверх, чтобы уменьшить риск сквозного прокола вены, тщательно фиксируйте катетер, чтобы он не смещался, особенно у детей и пожитых.

После того, как врач установит катетер в центральную вену, или медсестра — периферическую, место пункции проверяют каждые час-два, особенно если проводится длительная инфузия. Убедитесь, что место пункции вены хорошо видно (лучше применять прозрачные заклейки, а не марлевые салфетки).

Регулярно проверяйте, не появилось ли напряжения и отека в месте введения катетера. Спрашивайте пациента, нет ли боли, если говорить он не может, проверяйте место пункции чаще. Если вы заметите инфильтрацию или экстравазацию, сразу же прекращайте инфузию, и проверяйте, что произошло. Если инфильтрат большой, или раствор был раздражающий — немедленно зовите врача. Если катетер остался на месте, можно попробовать шприцом аспирировать часть попавшей в ткани жидкости, также через катетер можно вести антидот.

После удаления катетера больную руку надо держать в приподнятом положении (например, на подушке), и приложить холодный компресс, если это лекарства для химиотерапии — то теплый компресс. Если появляется некроз (обычно через может быть необходимой консультация хирурга.

Как документировать осложнения инфузионной терапии

Во-первых, нужно измерить участок измененных тканей, чтобы потом можно было оценить эффективность лечения. Обязательно нужно отслеживать состояние кожи и мягких тканей, чтобы избежать тяжелых осложнений, также это помогает оценить качество медицинской помощи.

Применение устройств для фиксации конечности, особенно в детской и гериатрической практике, может давать удивительные результаты: частота смещения катетеров может снизиться до нуля, и не будет тяжелых последствий. Соблюдение описанных выше несложных приемов может предотвратить осложнение. Ну а если оно все-таки возникло, то последствия можно сделать минимальными, если быстро и адекватно реагировать на случившееся.

Отдельно — о центральных венозных катетерах и имплантируемых портах

В соответствии с международными стандартами, раствор лекарственного средства, имеющий рН менее 5 и более 9, не должен вводиться через периферические вены. Например, это — ванкомицин (pH, ∼2.4) и фенитоин (pH, ∼12). То же самое касается и растворов, содержащих более 5% гидролизата белков, или 10% глюкозы.

Поскольку экстравазация такого раствора может иметь катастрофические последствия, то все их вводят через центральный венозный катетер или имплантируемый порт. Если приходится однократно вводить такой раствор в периферическую вену, то его вводят через толстый катетер, через боковой порт во время инфузии физиологического раствора, предпочтительнее иметь отдельный катетер для таких целей.

При введении вязкого или раздражающего раствора через центральный венозный катетер, всегда следует проверять обратный ток крови по катетеру, и часто делать это повторно во время инфузии. Если обратного тока крови нет, то это можно указывать на выход катетера из просвета вены, и утечке раствора в окружающие ткани. Также может быть тромбоз катетера — в этом случае срочно останавливайте инфузию и зовите врача во избежание тяжелых последствий.

Иногда врач проводит контрастное исследование под контролем рентгена, чтобы убедиться в проходимости катетера и может растворить тромб.

Если венозный доступ осуществляется через имплантируемый порт, важно выбирать иглу адекватной длины, чтобы она не выскочила из порта, и раствор не ушел бы в окружающую клетчатку. Если же игла окажется слишком длинной, то это может привести к повреждению мембраны порта, в результате чего экстравазация будет происходить уже через мембрану.

Когда инфузия лекарственного средства проводится через имплантируемый порт, нужно часто осматривать место установки порта, как и при работе с периферическим венозным катетером, чтобы своевременно выявить любую утечку или отек подкожной клетчатки рядом с портом. Если пациент жалуется на ЛЮБОЙ дискомфорт, немедленно прекращайте инфузию и посмотрите, что случилось. При подозрении на проблемы с портом — срочно зовите врача. Иногда порт может отсоединяться от катетера, и в этом случае пациенту нужна немедленная операция.

Шкала оценки инфильтравии в месте инфузии (Journal of Infusing Nursing, 2006)

0 баллов — нет никаких симптомов
1 балл — напряженная кожа, отек до 2.5 см в диаметре, холодная наощупь кожа, боль может быть, а может и не быть
2 балла — Кожа натянута, отек от 2 до 12 см в любом направлении, кожа холодная наощупь, боль может быть, а может и не быть
3 балла — кожа напряжена и просвечивает, большой отек — больше 15 см, в любом направлении, кожа холодная наощупь, боль средняя или умеренная, может быть онемение
4 балла — Кожа напряжена, просвечивает, плотная, может быть даже повреждена, обесцвечена, имеется выраженный отек, более 15 см, в любом направлении, отек глубокий, есть нарушения кровотка, боль от умеренной до выраженной, могут быть синяки

К последней, самой тяжелой степени инфильтрации, также относится утечка любого препарата крови, раздражающего или очень вязкого раствора.

Системные осложнения, вызванные внутрисосудистым введением анестетика, могут представлять опасность для жизни пациента. Некоторые стоматологи проводят аспирационный тест на постоянной основе, однако факты свидетельствуют о том, что терапевты проводят его в 50 % случаев, хирурги — в 52 % случаев, а вот ортопеды — только в 25 % случаев (С. А. Рабинович, О. Н. Московец, М. В. Лукьянов, Е. В. Зорян). При блокаде нижнего альвеолярного нерва у детей и подростков игла чаще попадает внутрь сосуда, чем у взрослых.

Офтальмологические нарушения после внутриротовой анестезии являются частым осложнением. Симптомы выражаются в нечеткости зрения и слепоте (временная слепота). Кроме того, анестезия мотонейронов может привести к мидриазу (расширению зрачка), птозу (спаданию век), и диплопии (двоению в глазах). Также была описана симптоматика подобных проявлений с участием птоза, энофтальма (спада глазного яблока в орбите) и миоза (папиллярных ограничений) [6].

По мнению многих авторов, внутрисосудистая инъекция является распространенным явлением в основном проводниковой анестезии. Для предупреждения внутрисосудистого введения анестетика необходимо в обязательном порядке проводить аспирационную пробу.

Аспирация — обратное всасывание среды из области введения местного анестетика — используется для того, чтобы по отсутствию появления крови в растворе удостовериться, что кончик иглы не находится внутри кровеносного сосуда. Это необходимо для того, чтобы предотвратить введение в кровеносное русло высококонцентрированных веществ, используемых в современной технологии местного обезболивания.

Целью проведения нашего исследования являлось повышение безопасности проведения местного обезболивания в стоматологии с применением аспирационной пробы.
Для достижения поставленной цели мы сравнили эффективность проведения аспирационной пробы различными по конструкции карпульными шприцами, изучили частоту положительных аспирационных проб при проведении анестезии нижнего луночкового нерва различными проводниковыми методами обезболивания, а также разработали алгоритм профилактики внутрисосудистого введения анестетика при проведении проводниковой анестезии НЛН (нижний луночковый нерв).

Аспирация используется для того, чтобы по отсутствию появления крови в растворе удостовериться, что кончик иглы не находится внутри кровеносного сосуда. Это позволяет предотвратить введение в кровеносное русло высококонцентрированных веществ, используемых в современной технологии местного обезболивания.

В своем исследовании мы использовали карпулы анестетиков с различными по строению резиновыми поршнями: с ретенционным ободком по своему периметру (Ubistesin 3MESPE), без ретенции (Septanest). Также карпульные шприцы, отличающиеся по строению концевой части поршня (рис. 1 а, б): шприц с поршнем «якорного» типа, имеющий в своей концевой части три зацепа, удерживающих резиновый поршень; шприц с поршнем «штопорного» типа, имеющий в своей концевой части один штопоровидный крючок, ввинчивающийся в резиновый поршень карпулы; шприц с поршнем «крючкового» типа, имеющий в своей концевой части два взаимно разнонаправленных крючка, удерживающих резиновый поршень карпулы; шприц с поршнем «стреловидного» типа, имеющий в своей концевой части стреловидный зацеп, удерживающий резиновый поршень карпулы.

Практическая часть исследования проводилась следующим образом. В подкрашенную красителем воду позиционировали иглу собранного карпульного инъектора. Аспирационную пробу проводили каждым шприцем путем захвата раствора в карпулу обратным движением поршня. Данные о результатах аспирационной пробы были фотодокументированы и внесены в таблицу.

Клиническая часть исследования проводилась на базе ЛХО № 2 МАУ «Балашихинская стоматологическая поликлиника». В исследовании принимали участие 270 пациентов в возрасте от 25 до 75 лет с диагнозом «хронический периодонтит зубов нижней челюсти».

В качестве методики обезболивания нижнего луночкового нерва мы использовали пять наиболее популярных в отечественной стоматологии методов:

мандибулярную анестезию методом пальпации;
торусальную анестезию;
анестезию по методу Гоу — Гейтса;
анестезию по методу Визирани — Акинози;
анестезию по методу Ибрагимова.

Обезболивание проводилось под тщательной оценкой системных показателей гемодинамики. При использовании пульсоксиметра ArmedYX 300 отслеживаемое увеличение ЧСС на 30 единиц сразу после местной анестезии свидетельствовало о внутрисосудистом введении анестетика. Дополнительно врач проводил опрос о самочувствии пациента на наличие чувства сердцебиения, страха, боли в животе, тошноты, что также говорило о кардиотоксическом действии эпинефрина в составе местного обезболивающего раствора.

Результатами нашего исследования являлись следующие данные.

При сравнении различных систем для проведения аспирационной пробы наилучшие показатели были у комбинаций из шприцев с поршнями «якорного» и «штопорного» типов и карпул с ретенционной выемкой. Более информативные данные о результатах практической части исследования приведены ниже (таблица № 1) .

Таблица № 1. Возможные комбинации используемого в стоматологии инъекционного инструментария и эффективность аспирации

Частота успешно проведенной аспирации красителя из 100 проб
Тип карпулы	Шприц с поршнем «якорного» типа	Шприц с поршнем «штопорного» типа	Шприц с поршнем «крючкового» типа	Шприц с поршнем «стреловидного» типа
С ретенционным ободком	100	89	55	5
Без ретенционного ободка	0	38	37	15

Исходя из наших результатов мы считаем, что использование карпул с ретенционной выемкой облегчает проведение аспирационной пробы. Можно считать, что они «предназначены» для проведения аспирационной пробы. Ретенционная выемка позволяет использовать большинство карпульных шприцев с наилучшими результатами при использовании шприцев с «якорным» и «штопорным» типом поршня. «Якорный» захват поршня наиболее надежен, он фиксирует резиновый поршень карпулы настолько сильно, что представляется возможным вывести его целиком при приложении значительных усилий на кольцо инъектора, не говоря уже о проведении аспирационной пробы.

Стоит отметить, что «якорный» тип поршня карпульного инъектора предполагает использование только карпул с ретенционной выемкой. Шприцы с поршнем «крючкового типа» можно использовать при любом типе карпул, однако требуется много времени для сборки шприца и приложение значительной силы. Мы не рекомендуем использовать шприцы со «стреловидным» поршнем, так как они не приспособлены для проведения аспирационной пробы, что подтверждается данными нашего экспериментального исследования.

В клинической части исследования при проведении аспирационной пробы у пациентов, проходивших амбулаторно-хирургическое лечение, были получены следующие данные. Наименьшая частота внутрисосудистого введения отмечена при проведении анестезии по методике Гоу — Гейтса, а наибольшая частота положительных аспираций получена в группе, где проводили торусальную анестезию. Также получены и документированы данные о проведении аспирационных проб при обезболивании другими методами (таблица № 2) .

Таблица № 2. Частота положительных аспирационных проб при проведении блокады нижнего луночкового нерва с использованием различных методов обезболивания, применяемых в отечественной стоматологии.

Метод анестезии	«-»	«+»	%	Симптомы
Мандибулярная	103	8	7,6 %	0
Торусальная	51	9	17,6 %	1
Гоу — Гейтс	67	3	4,91 %	0
Акинози	21	1	4,76 %	0
Ибрагимов	28	2	7,14 %	0

Из приведенных выше данных видно, что примерно каждый восьмой пациент, которому проводится торусальная анестезия, может войти в группу риска осложнений местного обезболивания. Возможно, столь высокая частота положительных аспирационных проб при использовании данного метода обусловлена особенностями анатомического строения верхнечелюстной артерии (a.maxillaris). Требуется проведение дальнейших исследований для подтверждения данной гипотезы.

Представляют интерес полученные данные о частоте положительных аспираций при проведении других методов. Также прослеживается определенная закономерность. Мандибулярная анестезия методом пальпации и методика Ибрагимова проводятся примерно на одном уровне и имеют схожее значение по частоте внутрисосудистого введения анестетика (7,6 и 7,14 % соотв.). Метод Акинози и Гоу — Гейтс также проводятся примерно на одном уровне по отношению к ветви челюсти (их еще называют высокими) — по частоте внутрисосудистого введения они не отличаются друг от друга. Этот факт лишний раз свидетельствует о наличии закономерности в строении верхнечелюстной артерии по отношению к ветви нижней челюсти. Возможно, что магистральная ветвь нижнечелюстной артерии находится на уровне проведения нижней челюсти — зона проведения одноименной анестезии.

Аспирационную пробу необходимо проводить многократно. В случае положительной аспирации при появлении крови в карпуле рекомендуется не переделывать анестезию, а изменять положение иглы.

При проведении техники аспирационной пробы мы оценивали общее состояние (пульс, сатурация кислородом) пациента на всех этапах стоматологического лечения. Из 270 пациентов положительная аспирация выявлена у 23 пациентов, после профилактических мер: изменение положение иглы, повторная аспирация — симптомы внутрисосудистого введения выявлены только у одного больного. Пациент предъявлял «типичные» для данного осложнения жалобы: резкое появление сердцебиения, страх, тошнота. Объективно на лице в области подглазничного отверстия определялась зона ишемии лица со стороны проводимого обезболивания. Изменилось показание пульсоксиметра, увеличение ЧСС с 128 до 165 (20—30 ед.).

Данный случай наглядно демонстрирует клинику такого системного осложнения проведения анестезии, как внутрисосудистое введение. Профилактика внутрисосудистого введения с использованием аспирационной пробы, проводимая нами, позволяет полностью исключить данное осложнение местного обезболивания в стоматологии, снизить риск с 8,52 до 0,37 %.

Практические рекомендации

На основании накопленного нами опыта мы разработали следующие практические рекомендации (алгоритм) для выполнения аспирационной пробы с целью профилактики внутрисосудистого введения местного анестетика.

Мы рекомендуем использовать карпулированные формы местного анестетика с ретенционным ободком. Карпульные шприцы с поршнем «штопорного» типа и поршнем «якорного» типа позволяют плотно захватить резиновый поршень карпул, данные системы захвата не слетают с ретенционного ободка.

Аспирационную пробу необходимо проводить многократно. В случае положительной аспирации при появлении крови в карпуле мы рекомендуем не переделывать анестезию, а изменять положение иглы, многократно проводя аспирацию.

Заключение

Профилактика внутрисосудистого введения местного анестетика является важнейшим аспектом местного обезболивания в стоматологии. Успех ее проведения зависит от типа используемых карпульных шприцев и карпул. Карпулы с ретенционным ободком и инъекторы с поршнем «якорного» и «штопорного» типа позволяют провести аспирационную пробу в 89—100 % случаев. Можно считать, что такая комбинация используемого инъекционного инструментария существенно повысит безопасность местного обезболивания. По результатам проведенного нами клинического исследования можно заключить, что аспирационная проба — высокоэффективный метод профилактики внутрисосудистого введения анестетика. Среди всех методов обезболивания нижнего луночкового нерва торусальная анестезия приводит к более высокой частоте внутрисосудистого введения (анестетика). Мы не рекомендуем использовать данный метод обезболивания без соблюдения техники аспирационной пробы.

ГБОУ ДПО «Российская медицинская академия последипломного образования»

Инструменты для местной анестезии в стоматологии и оценка качества карпулы местного анестетика

Журнал: Стоматология. 2014;93(2): 37‑39

Кузин А.В. Инструменты для местной анестезии в стоматологии и оценка качества карпулы местного анестетика. Стоматология. 2014;93(2):37‑39.
Kuzin AV. Practical advices in choosing local anesthesia tools in dentistry. Management of carpule's quality in local anesthesia in dentistry. Stomatologiya. 2014;93(2):37‑39. (In Russ.).

ГБОУ ДПО «Российская медицинская академия последипломного образования»

В настоящей статье дано описание инструментов для местной анестезии. Даны практические рекомендации по выбору инъекционной иглы: длинна, размер, скос. При использовании стоматологических игл во время проведения местного обезболивания следует руководствоваться правилом: "одна инъекция - один вкол". При малейшем контакте иглы с костной тканью челюсти возникает деформация ее скоса. Перед проведением обезболивания важно оценить состояние карпулы. Некоторые недостатки качества карпул возможно выявить до их использования: признаки коррозии колпачка, наличия осадка или пузырьков воздуха, выступающий резиновый поршень. Если в упаковке анестетика выявляются карпулы с вышеперечисленными дефектами - рекомендовано утилизировать всю упаковку. Использование таких карпул в клинической практике небезопасно.

ГБОУ ДПО «Российская медицинская академия последипломного образования»

Местное обезболивание служит основным средством предотвращения боли при проведении стоматологического лечения. Несомненно, эффективность местной анестезии зависит от правильного выбора местного анестетика, метода обезболивания, инъекционного инструментария, качества карпул. Современные технологии в обезболивании предлагают практикующему стоматологу широкий выбор средств для доставки местного анестетика в ткани. Ежегодно выпускаются новые конструкции карпульных шприцев, различные типы стоматологических игл, предназначенные для снижения степени болезненности местной анестезии и повышения ее безопасности.

Карпульные шприцы. Современные карпульные шприцы - это инструменты, прошедшие все этапы «естественного стоматологического отбора». Действительно, эволюция медицинского стоматологического шприца позволила выбраковывать ненужные элементы и создать совершенный инструмент, отвечающий всем требованиям безопасности и эргономики. Карпульные шприцы должны быть изготовлены из качественной медицинской стали, устойчивой к физико-химическому воздействию антисептиков и стерилизаторов. Нередко врачу-стоматологу приходится проводить лечение пациентов с хроническими гемоконтактными заболеваниями. В этих случаях одноразовые системы для местного обезболивания, которые можно утилизировать сразу после использования - наиболее подходящий выбор.

Среди основных частей стоматологического карпульного шприца выделяют корпус, шток, плунжер, упоры (держатели), кольцо, наконечник.

Держатель шприца предназначен для упора указательным и средним пальцем руки. Предпочтительно, чтобы ниже держателя располагалась выемка для фиксации шприца в руке, либо держатели должны иметь форму кольца.

Наиболее важная деталь карпульного шприца - плунжер. Он предназначен для проведения аспирационной пробы. Плунжер вводится в ретенционную выемку поршня карпулы. При этом поршень остается плотно фиксированным плунжером. При оттягивании кольца карпульного инъектора назад плунжер вместе с поршнем карпулы смешается, создается отрицательно давление. Под воздействием этого давления происходит аспирация среды из места положения иглы.

По форме плунжеры могут быть различной формы: «стреловидный», «штопор» (рис. 1, а, см. на цв. вклейке) Рис. 1. Плунжеры карпульных инъекторов, предназначенные для проведения аспирационной пробы. а - «штопор»; б - «якорь». , «якорь» (рис. 1, б, см. на цв. вклейке). Для проведения аспирационной пробы наиболее эффективны плунжеры «якорного» и «штопорного» типа, которые наиболее плотно фиксируют поршень карпулы. Наименее эффективным следует признать стреловидный тип. Считается, что такая форма нужна для частичного «пробивания» поршня карпулы. На практике эта операция невыполнима: при попытке провести аспирацию плунжер «выскакивает» из поршня. Некоторые авторы предлагают при сборке шприца «поколачивать» по кольцу инъектора, для пробивания поршня стрелой. Это методика может привести к самотравмированию и необратимым изменениям в карпуле: смещению поршня и нарушению его герметичности, появлению микротрещин стекла. Поэтому такая техника сборки шприца не рекомендована.

Инъекционные иглы. Инъекционные иглы предназначены для введения растворов лекарственных средств в ткани. С середины XX века для проведения местного обезболивания в клиническую практику вошли одноразовые инъекционные иглы, которые имеют значительные преимущества перед стерилизующимися иглами: малый размер, острота, большой выбор длинны и диаметров, гибкость и жесткость.

Стоматологические карпульные иглы различаются по размеру (диаметру) и длине. Размер иглы согласно международным стандартам измеряется в калибрах (Gauge). Иглы 30G имеют наружный диаметр 0,5 мм, 27G - 0,4 мм, 25G - 0,5 мм соответственно. По длине различные производители выпускают короткие (10-16 мм), средние (20-25 мм) и длинные иглы (30-42 мм). Короткие иглы 27G, 30G предназначены для пародонтальных способов обезболивания: интралигаментарной и интрасептальной анестезии. Иглы средней длины 27G, 30G предназначены для периапикальной инфильтрационной анестезии. Длинные иглы 27, 25G предназначены для проведения проводниковых методов обезболивания зубов. Иглы 30G не предназначены для проведения проводниковой анестезии, т.к. они значительно изгибаются в тканях (дефлекция). Также использование игл малого диаметра увеличивает риск внутрисосудистого введения анестетика.

Стоит отметить, что уменьшение диаметра иглы не влияет на степень болезненности инъекции. Пациент не может различить, какой диаметр иглы использует врач. Это заключение справедливо как для взрослых, так и для пациентов детского возраста.

Стоматологические иглы, как правило, имеют стандартный скос (Regular bevel). Данный тип скоса (рис. 2, см. на цв. вклейке) Рис. 2. Стандартный скос карпульной иглы. Фотография под увеличением микроскопа. наименее травматичен для тканей и может быть использован для проводниковых и инфильтрационных методов. В тоже время выпускаются и другие типы скосов: скос хирургическое лезвие (Septoject evolution) - для инфильтрационных и пародонтальных методов, скос со смещенным режущим центром (Quicksleeper DHT), скос удлиненный режущий (W8H Anesto) - для внутрикостной анестезии (остеоцентральной, транскортикальной).

При использовании стоматологических игл во время проведения местного обезболивания следует руководствоваться правилом: «одна инъекция - один вкол». При малейшем контакте иглы с костной тканью челюсти возникает деформация ее скоса (рис. 3, см. на цв. вклейке) Рис. 3. Деформация острия иглы после однократного использования (мандибулярная анестезия). Фотография под увеличением микроскопа. : прямой загиб, обратный загиб, отлом острия. При проведении инъекций в разных сегментах полости рта повторное использование карпульной иглы приводит травмированию тканей и может быть причиной постинъекционной боли и даже парестезии.

Карпула местного анестетика. Карпула состоит из стеклянного цилиндра, резинового поршня, металлического колпачка и мембраны (рис. 4, см. на цв. вклейке). Рис. 4. Карпула анестетика. а - мембрана, фиксированная металлическим колпачком; б - резиновый поршень с ретенционной выемкой. Резиновый поршень занимает 0,2-0,3 мл объема карпулы, на нем должна быть ретенционная выемка (Ubistesin (3M ESPE), Ubistesin forte (3M ESPE), Mepivastesin (3M ESPE), в которую устанавливается плунжер шприца. Это необходимое условие для проведения аспирационной пробы.

К сожалению, не все производители выпускают карпулы, поршень которых адаптирован для аспирационной пробы.

Для облегчения скольжения резинового поршня по поверхности стекла, в технологическом процессе производства карпул используются различные средства. Ранее использовали глицерин, парафин, который наносили в прорези поршня. Сегодня большинство производителей используют внутреннюю силиконизацию карпулы, при этом силикон наносят в условиях высоких температур, при которых он «спекается» с поверхностью стекла. Стоит отметить, что силикон абсолютно инертный материал: он не взаимодействует с компонентами раствора анестетика, не растворяется в нем.

Мембрана, фиксированная к стеклу карпулы алюминиевым колпачком, полупроницаема. При длительном контакте с каким-либо химическим раствором возможна его диффузия внутрь карпулы, поэтому нельзя «замачивать» карпулы в спирте, антисептиках, дезинфицирующих средствах. По правилам асептики достаточно обработать поверхность карпулы салфеткой, пропитанной антисептиком.

Во время сборки инъекционного инструментария, при закручивании иглы важно проводить перфорацию мембраны в ее центре (рис. 5, см. на цв. вклейке). Рис. 5. Перфорация мембраны карпулы. При эксцентричной перфорации (выделено красным) иглой возможно «подтекание» раствора из-под колпачка. При эксцентричной перфорации мембраны во время проведения обезболивания возможно подтекание анестетика из-под края алюминиевого колпачка и попадание его в полость рта пациента.

Перед проведением обезболивания важно оценить состояние карпулы (рис. 6, см. на цв. вклейке). Рис. 6. Дефекты карпул. а - пузырек воздуха размером более 3 мм; б - трещина стекла карпулы; в - осадок в растворе. Карпула не должна иметь внешних повреждений. Ее колпачок не должен иметь признаков коррозии. Раствор анестетика должен быть прозрачным и не содержать осадка, крупных (размером с горошину) пузырьков воздуха. Резиновый поршень карпулы должен быть в пределах стекла, и не выступать за его пределы.

- Трещины стекла карпулы - это следствие неправильного хранения анестетика или плохих условий его транспортировки. Вследствие расстерилизации раствора и возможного ее раскалывания в полости рта пациента использование карпул с трещинами недопустимо.

- Крупные пузырьки воздуха (размером с горошину) и выдвижение поршня за пределы стекла - верный признак того, что анестетик был ранее заморожен. Это возникает при нарушении температурного режима при хранении и транспортировке анестетика, что возможно в суровых климатических условиях России. Использовать замороженные карпулы не рекомендуется, необходимо утилизировать всю упаковку анестетика.

Качественная упаковка во многом может защитить анестетики от резкого перепада температур. Определенным преимуществом обладает упаковка анестетиков в банки с теплоизолирующим материалом (Ubistesin (3M ESPE), Ubistesin forte (3M ESPE), Mepivastesin (3M ESPE), по сравнению с упаковкой в блистеры.

- Осадок - это верный признак истечения срока годности анестетика или его хранения на солнце. Использование таких карпул противопоказано, вследствие необратимых окислительно-восстановительных процессов в растворе, приводящих к инактивации анестетика и вазоконстриктора.

Некоторые недостатки качества карпул можно выявить только в процессе их использования: слабая герметичность, «тяжелый» ход поршня, застопоривание резинового поршня - наиболее распространенные из них.

При проведении пародонтальных способов обезболивания введение анестетика проводится с приложением большого давления. Нередко анестетик просачивается через поршень, попадая в полость рта пациента, вызывая дискомфорт («горький вкус»). При этом снижается эффективность обезболивания зуба из-за недостаточного распределения анестетика в губчатом слое кости. Слабая герметичность резинового поршня карпулы - следствие технологического процесса производства анестетика. При возникновении систематических случаев микроподтекания раствора из под резинового поршня карпулы практикующему врачу можно рекомендовать использовать анестетики других производителей.

«Застопоривание» и «тяжелый» ход поршня тоже качественный недостаток ряда карпул. Перемещение поршня внутри карпулы должно быть плавным. Застопоривание поршня приводит к тому, что анестетик вводится в ткани скачкообразно большими порциями, причиняя пациенту боль. При возникновении систематических случаев «застопоривания» и «тяжелого» хода поршня врачу следует сменить производителя анестетика.

Заключение

Разработка новых средств доставки анестетика в ткани по большей части направлена на снижение степени болезненности и повышение уровня комфорта пациента во время проведения местного обезболивания. В настоящее время разработаны компьютерные шприцы, виброшприцы, безыгольные инъекторы. Однако эти средства не получают широкого распространения в стоматологии ввиду их высокой стоимости, ограниченного числа показаний к использованию и нерентабельности. В погоне за «совершенным» шприцом и сверхтонкой иглой нередко теряются основы технологии местного обезболивания.

В выборе инструментов для местной анестезии врач стоматолог может учитывать вышеописанные требования.

При выборе местного анестетика важно контролировать качество карпульной формы, которое можно определить при внешнем осмотре или в процессе их использования. Немаловажную роль в сохранности анестетика при транспортировке и хранении играет внешняя упаковка, которая должна защищать анестетик от механического повреждения, от перепада температур, воздействия солнечных лучей и кислорода. Недопустимо использовать анестетик в карпулах ненадлежащего качества и с истекшим сроком годности лекарственного средства.

Тверская государственная медицинская академия

Аспирационный тест при интралигаментарной анестезии

Журнал: Стоматология. 2013;92(2): 19‑21

Медведев Д.В., Петрикас А.Ж., Дюбайло М.В., Курицына И.Ю. Аспирационный тест при интралигаментарной анестезии. Стоматология. 2013;92(2):19‑21.
Medvedev DV, Petrikas AZh, Diubaĭlo MV, Kuritsyna IIu. Aspiration in intraligamentous anesthesia. Stomatologiya. 2013;92(2):19‑21. (In Russ.).

Тверская государственная медицинская академия

Большинство исследователей рассматривают интралигаментарную инъекцию как инфильтрационную диффузную анестезию. Проспективное, рандомизированное, перекрестное исследование интралигаментарной анестезии (ИЛА) проведено, во-первых, для определения частоты позитивной аспирации при ней, и, во-вторых, для оценки глубины обезболивания пульпы нижнего первого моляра (Н6) на основании его электротестирования при положительной или отрицательной аспирации. У 36 студентов-стоматологов проведена ИЛА 4% артикаином с эпинефрином у Н6. Анестезия этих 36 моляров была получена 114 вколами компьютерного шприца (в среднем - 3,2 вкола на каждый моляр). Каждый вкол контролировался электротестированием. Последние 1-2 вкола при проведении каждой ИЛА сопровождались положительной аспирацией и одновременно пульпарной аналгезией 100-200 мкА. В 34 (94,4%) из 36 моляров ИЛА сопровождалась положительной аспирацией. В 2 (5,6%) случаях успешная, но замедленная анестезия имела отрицательную аспирацию при всех 5 вколах. Таким образом, впервые изучено явление аспирации при ИЛА. Положительная аспирация (94,4%) является предвестником эффективного обезболивания. Это явление представлено как доказательство сосудистого механизма ИЛА.

Тверская государственная медицинская академия

Считается, что проведение аспирационной пробы необходимо для предотвращения попадания иглы в кровеносный сосуд и исключения быстрого внутрисосудистого введения раствора местного анестетика, что может вызвать токсические осложнения [2]. Аспирация — важный фактор безопасности местной анестезии, являющийся, согласно данным Американской дентальной ассоциации (1973) [7], желательным элементом инъекции, а по S. Malamed (2004) [8] — обязательным.

Интралигаментарная анестезия (ИЛА) получила широкое распространение благодаря появлению неаспирационного прессорного шприца. Аспирацию при спонгиозных методах анестезии невозможно провести прессорным шприцем, так как конструктивно в нем отсутствует механическая связь поршневого стержня c пробкой картриджа. Однако S. Malamed (2002, 2004) [8, 9] считает, что при нормально выполненной ИЛА, внутрикостной и интрасептальной анестезиях имеет место только отрицательный аспирационный тест (!?). А.Ж. Петрикас и соавт. (1987, 2011) [4, 5, 10], наоборот, показали, что при спонгиозных анестезиях — интрасептальной и собственно внутрикостной — почти всегда наблюдается положительная (!) аспирация, что подтверждают диссертационные работы их коллег [1, 3, 6].

Это — одно из доказательств сосудистого механизма внутрикостных или дополнительных анестезий. Дентист не учитывает опасности сосудистой инъекции. Нам не известны исследования аспирации при этих методах анестезии.

Предполагая сосудистый механизм интралигаментарной инъекции, целесообразно пронаблюдать связь положительной или отрицательной аспирации с эффективностью анестезии. Особый интерес при этом представляют нижние боковые зубы — самые трудные для местной анестезии. Использование электротестирования — важный элемент для лабораторной оценки обезболивания [11].

Нашими целями были: 1) исследовать частоту аспирационного теста (АТ) при ИЛА; 2) исследовать с помощью электротестирования глубину ИЛА пульпы нижнего моляра при положительной и отрицательной аспирации.

Материал и методы

Рандомизированное, перекрестное исследование выполнено на 36 добровольцах — 17 мужчинах и 19 женщинах — в возрасте 19—24 лет, практически здоровых (класс I ASA). У каждого студента после обсуждения с ним характера инъекции было получено добровольное письменное согласие на участие в опыте. Исследование одобрено этическим комитетом ТГМА с дальнейшей экспертизой протоколов.

Для ИЛА использовали 4% растворы артикаина с адреналином 1:100 000 и 1:200 000.

ИЛА каждому испытуемому проведена 1 оператором (М.Д.В.) с помощью компьютерного инъектора QuickSleeper («Dental Hi Tec Cholet», France). Использовались специальные интралигаментарные иглы длиной 9 мм и диаметром 0,3 мм Intralig-S («Dental Hi Tec»). Объектом тестирования был нижний первый моляр (Н6). При этом исключались зубы с гингивитом, с большими реставрациями и эндодонтическим лечением. Инъектор обеспечивал постоянную скорость инъекции — 1,0 мл МА≈102 с. Анестезия достигалась применением 2 классических вколов — с мезиальной и дистальной сторон этого зуба, а при их недостаточности — еще 1—3 дополнительными вколами [3].

Аспирация создавалась реверсом поршня шприца в течение 5 с. Электроодонтометрию (ЭОМ) проводили до анестезии и после каждого вкола. Эффективность анестезии оценивали по величине порога болевой чувствительности пульпы с помощью аппарата для электроодонтодиагностики ИВН-98 Пульпотест-Про («Каскад», Россия) у интактного нижнего первого моляра. Порог болевой чувствительности определяли в микроамперах (мкА) до появления ощущения боли. Критерием наступления пульпарной аналгезии служила величина порога в 100 мкА, признанная в российской эндодонтии показателем гибели пульпы или выключения ее чувствительности [2]. Дополнительно учитывали второй показатель глубины обезболивания — максимальную аналгезию (полную анестезию) — 200 мкА.

Статистический анализ результатов проводился с применением критериев t и χ 2 .

Результаты и обсуждение

ИЛА была успешной на всех 36 нижних молярах. Она достигалась несколькими вколами — от 1 до 5 (в среднем — 3,2), а также увеличением вводимой дозы анестетика от 0,4 до 1,2 мл (в среднем — 0,7 мл). В 2 случаях анестезия была достигнута 1 вколом. При каждой эффективной анестезии 1 из вколов, а иногда и 2 сопровождались положительной аспирацией. Показателем положительной аспирации была тонкая струйка крови или розовое окрашивание раствора анестетика в картридже (рис. 1). Рисунок 1. Положительный АТ при ИЛА, проведенный с помощью компьютерного шприца SleepеrOne («Dental Hi Tec»).

В результате в 34 (94,4%) из 36 успешных ИЛА имели место положительные аспирации. Положительный АТ наблюдался при 50 (43,9%) из 114 вколов, отрицательный — при 64 (56,1%) вколах (см. таблицу).

При положительной аспирации (50 вколов) пульпарная аналгезия развивалась в 42 (84%) наблюдениях, причем в 35 (70%) — с максимальным показателем ЭОМ 200 мкА (полное выключение чувствительности) и в 7 (14%) — со сниженными ее порогами — от 102 до 180 мкА. При выполнении 8 (16%) вколов показатели ЭОМ не достигали уровня пульпарной аналгезии, хотя и были относительно высокими — от 60 до 90 мкА.

При отрицательной аспирации (64 вкола) показатели ЭОМ в 96,9% случаев были ниже 100 мкА. В 2 (3,1%) случаях тем не менее через 3—5 мин наблюдалась пульпарная аналгезия с показателями ЭОМ 100 и 110 мкА.

В 2 случаях из 36 ИЛА, когда пульпарная аналгезия наступила сразу после единственного вкола при положительном аспирационном тесте, показатель ЭОМ был максимальным — 200 мкА.

Изменения средних показателей ЭОМ с результатами статистической обработки в зависимости от положительной или отрицательной аспирации представлены на рис. 2. Рисунок 2. Средние величины болевого порога (мкА) с доверительными границами (р=0,05) при ЭОМ нижнего первого моляра до и после ИЛА в случаях положительной или отрицательной аспирации при 114 вколах 4% артикаина с адреналином.

В 34 (94,4%) из 36 случаев ИЛА нижнего первого моляра почти всегда достигалась несколькими вколами (всего — 114), один из которых, как минимум, был с положительной аспирацией. Абсолютный положительный успех инъекций достигался как благодаря нескольким вколам, так и увеличенной дозе ИЛА (в среднем — 0,7 мл). Только в 2 (5,6%) из 36 анестезий во всех вколах аспирация была отрицательной. Это противоречит данным S. Malamed, повторенным в нескольких руководствах ADA. Положительную аспирацию при интрасептальной анестезии наблюдал А.Ж. Петрикас в 1987 г., при внутрикостной (Stabident Technic) — Л.А. Якупова в 2006 г. и при интрасептальной — О.Е. Ефимова в 2011 г., что отражено в их диссертационных работах [1, 4, 6].

Положительная аспирация, как правило, сочеталась с пульпарной аналгезией и, наоборот, отрицательная аспирация почти всегда — с недостаточным обезболиванием.

В 2 случаях пульпарная аналгезия развилась при отсутствии крови в шприце (АТ — отрицательный) только за счет инъекционного давления и диффузии (инфильтрации) анестетика, т.е. без явного сосудистого компонента. И, наоборот, в других 2 случаях полная анестезия практически под иглой была достигнута при положительной аспирации 1 сосудистой инъекцией. В остальных случаях имел место смешанный механизм анестезии: сосудистый плюс диффузный. Тем не менее сосудистый компонент преобладал над диффузным: 84% против 3%.

В этом логичном объяснении необходимо учитывать анатомию анестезируемого нижнего первого моляра, состоящего из 2 корней с разными источниками кровоснабжения.

Отсутствие пульпарной аналгезии с положительным аспирационным тестом в 8 (16%) из 50 инъекций при наличии довольно высоких показателей болевого порога при воздействии электрическим током, вероятно, обусловлено попаданием анестетика только к 1 из 2 корней первого моляра.

Применение ЭОМ оказалось полезной манипуляцией для получения надежного контролируемого обезболивания. В клинике при недостаточной электротестируемой анестезии дополнительные вколы всегда решали возникшую проблему [3].

Итак, в настоящем исследовании впервые изучено явление аспирации при интралигаментарной инъекции. Положительная аспирация наблюдалась в 94,4% случаев при проведении ИЛА, она является показателем эффективного обезболивания; представлено очевидное доказательство сосудистого механизма ИЛА в виде положительной аспирации при инъекции, которая прямо связана с ее обезболивающим эффектом; при ИЛА, проведенной с отрицательной аспирацией, в некоторых редких случаях возможно развитие обезболивания пульпы зуба с некоторой задержкой (3—5 мин) этого эффекта и его снижением.

Читайте также: